黄灿华教授 实验室

2021.09.17 贺凯分享“肌酸通过激活Smad2/3可促进癌症转移”的故事



研究背景

转移是癌症患者死亡的主要原因。结直肠癌(CRC)是常见的死亡原因的癌症,约10%35%CRC患者在诊断时存在转移,70%CRC患者最终出现肝转移,而大多数CRC肝转移患者如未得到及时治疗会在6-20个月内死亡。肌酸被广泛用于提升肌肉质量和功能,对运动员和健美运动员而言,是最受欢迎的营养补充剂之一。膳食肌酸补充剂已用于临床试验,以逆转CRC患者的体质,尽管结果表明肌酸的摄取不能改善患者的肌肉功能或生活质量。此外,有结果显示,使用皮下注射小鼠模型研究发现肌酸的摄取可抑制肿瘤生长,故而肌酸也成为了抗肿瘤补品。然而,皮下注射小鼠模型在临床上与肿瘤进展的研究并不相关,且肿瘤的生长并不总是与转移有关。因此,详细研究肌酸如何影响肿瘤进展仍有着重要意义。


1.肌酸促进肿瘤转移

为了详细研究肌酸如何影响肿瘤进展。作者通过在NSG小鼠盲肠末端构建HCT116细胞及患者来源的PDX肿瘤模型(1A),同时随机分组,饲养补充肌酸观察肌酸对肿瘤转移的影响。发现肌酸对原发性肿瘤生长无明显抑制作用(1B,C),但通过对肌酸的摄取显著增强了肿瘤肝转移(1D,F),同时作者做了另外的实验,看肌酸对小鼠的生存有何影响,发现肌酸的摄取还显著缩短了肿瘤小鼠的存活时间(1F,G)

作者进一步将带有荧光素酶标记的CT26细胞注射到BALB/C小鼠的盲肠末端,通过生物发光成像发现,食用肌酸的小鼠比对照小鼠出现更多的肝微转移,并显著减少荷瘤BALB/C小鼠的生存时间(1H,I)。此时问题来了,肿瘤转移是否一定由细胞对肌酸的摄取造成呢?作者在HCT116CRC57CT26细胞中敲除肌酸转运蛋白SLC6A8后,发现再补充肌酸不能促进肿瘤的转移(1J,K,L)。提示肌酸通过肌酸转运蛋白SLC6A8进入细胞促进肿瘤转移


Fig 1.Creatine promotes tumor metastasis


2.GATMCRC肝转移中上调

既然肌酸可促进肿瘤转移,那么肌酸促进肿瘤转移的关键是什么?肌酸既可以通过外源性的摄取,也可以内源性的合成,通过甘氨酸脒基转移酶(GATM)及胍基乙酸N-基转移酶(GAMT)介导的两步酶促反应合成(2A),因此作者进一步分析了肌酸合成及摄取相关蛋白GATMGAMTSLC6A8CK同工酶(包括CKMT2CKMCKB)的基因表达,发现与原发肿瘤相比,肝转移肿瘤细胞中的GATMGAMT被上调,而CKMT2CKMCKBSLC6A8则保持不变(2B)。对NCBI中病人样本的数据分析同样显示GATM在肠癌肝转移组织中明显上调(2C)


Fig 2.GATM is upregulated inCRC liver metastases


3.GATM促进CRC肝转移

GATM在肝转移中显著上调,那么GATM会对肝转移产生何种影响?为了研究GATM表达是否与CRC进展相关,作者通过肿瘤微阵列(TMA)免疫组化染色检查了GATM表达,发现与原发肿瘤相比,GATM表达不仅在肝转移中且上调(2I),且在CRC晚期患者体内的表达水平也明显高于早期患者(2 J)TCGA数据库中的438IIV期的CRC患者的肿瘤样本显示,与低水平的GATM患者相比,GATM高表达的CRC患者生存时间明显缩短(2 K),生存率分析表明,高水平的GATM与患者不良预后相关(2 L)。提示GATM是导致肠癌肝转移的一个重要因素


Fig 3.GATM promotes CRC liver metastasis


4.GATM敲除可显著抑制CRC肝转移,靶向GATM延长小鼠存活期

为了进一步证实GATM是否调节CRC转移,作者在CRC细胞系HCT116CRC57CT26中过表达以及敲减GATM。发现过表达GATM后可促进肝转移,GATM敲减可显著抑制CRC肝转移,添加肌酸可回复CRC的肝转移(3 A,B,C,D,E,F),同时在小鼠体内进行验证(图3J,H,I,G)。那么GATM促进CRC肝转移是否与其酶活直接相关?作者进一步在HCT116CRC57CT26细胞中高表达GATM及酶失活的DGATM,使用上述细胞构建小鼠肿瘤模型。发现敲减GATM显著抑制肠癌肝转移,回复GATM表达可促进肠癌肝转移,但添加酶失活的DGATM则对敲减GATM导致的肝转移降低无影响(3 K,L)。作者还在敲减GATM基础上给予CRC一线化疗药物5-氟尿嘧啶,发现单独敲减GATM可延长小鼠存活时间,GATM敲减后在使用5-氟尿嘧啶治疗可进一步提高小鼠存活率(3 M,N),提示靶向GATM可与目前用于CRC治疗的化学疗法互补



5.肌酸和GATM激活Smad2/3信号传导

肌酸促进肿瘤的转移,那么肌酸通过影响什么信号通路调控肝癌细胞转移?作者通过磷酸化多通路谱分析阵列发现,肌酸显著激活Smad2(4A,B)Smad2TGF-β信号通过的关键效应蛋白。作者使用肌酸处理HCT116CT26细胞后,检测TGF-β信号通路中关键Smad蛋白的磷酸化水平。发现肌酸不仅激活Smad2,还可激活Smad3(4C)GATM的高表达也可增加Smad2Smad3的磷酸化水平(4 D)。作者通过RT-PCR检测包括SnailSlugVimZeb1Twist1Tcf3Six1Zeb2Foxc2在内的Smad2/3下游靶基因,发现SnailSlug是肌酸处理后上调最明显的基因(4 E)Western和免疫组化进一步证实肌酸可使SnailSlug表达增加(4 F,G),提示肌酸通过激活Smad2Smad3上调SnailSlug促进肠癌的肝转移


Fig 4.Creatine activates Smad2/3 signaling


6.肌酸通过MPS1激活Smad2/3信号传导

Smad蛋白是TGF-β信号途径的关键蛋白,TGF-β通路的两个受体分别为TGF-β受体1(TGFBR1)TGF-β受体2(TGFBR2)TGFBR2使TGFBR1磷酸化,TGFBR1使Smad2Smad3磷酸化,作者发现TGFBR1抑制剂不影响肌酸诱导的Smad2/3磷酸化。提示,肌酸诱导的Smad2/3磷酸化必须通过除TGF-β受体以外的其他因素发生。据报道,单极纺锤体1(MPS1)是一种与有丝分裂进程和纺锤体检查点信号相关的蛋白激酶,可独立于TGF-β受体磷酸化Smad2Smad3

那么肌酸是否促进MPS1介导的Smad2/3磷酸化?作者将MPS1抑制剂MPS1-IN-3应用于CRC细胞系HCT116CT26和乳腺癌细胞系4T1Western印迹显示MPS1-IN-3可有效消除肌酸诱导的Smad2/3磷酸化(6 A)。作者敲除HCT116CT264T1细胞中的MPS1,并用肌酸处理细胞后发现,敲除MPS1后,肌酸不能增强Smad2/3磷酸化(6 B)T686是人MPS1激活的关键位点。因此,作者构建了该位点突变的MPS1,并将野生型和突变型MPS1转入MPS1敲除的HCT116细胞。结果显示,转入野生型MPS1后,肌酸可显著提高胞内Smad2/3磷酸化水平。但在MPS1敲除的细胞中转入突变体MPS1,肌酸不能激活Smad2/3(6C)。提示肌酸通过人MPS1中的T686位点激活Smad2/3


Fig 5.Creatine promotes cancer metastasis throughMPS1-activated Smas2/3 signaling


7.MPS1抑制剂抑制肠癌细胞肝转移并延长小鼠生存期

肌酸通过人MPS1中的T686位点激活Smad2/3,从而使SnailSlug基因上调导致肿瘤转移,那么抑制MPS1是否能抑制肌酸增强的肿瘤转移并提高生存率?作者使用MPS1敲除的HCT116CT264T1细胞构建小鼠肿瘤模型,添加肌酸喂养小鼠。发现MPS1敲除可抑制肌酸增强的癌细胞转移(7 A,B,C,D),抑制SnailSlug表达(7 E,F)和肿瘤细胞侵袭(7G)。此外,MPS1-IN-3处理可显著延长小鼠存活时间(7 H)。提示,MPS1的抑制可抑制肌酸增强的肿瘤侵袭和转移,并延长荷瘤小鼠的存活


Fig 7.MPS1 inhibitor suppresses liver metastasis andprolongs mouse survival


总结

本篇论文研究发现肌酸通过单极纺锤体1(MPS1)激活Smad2Smad3磷酸化,上调SnailSlug表达,促进癌症转移,并降低小鼠生存率。该研究应慎用肌酸这一营养补充剂,提示在结直肠癌,特别是TGFβ受体突变的结直肠癌中,敲除GATM或抑制MPS1可抑制肿瘤转移,有利于生存,GATMMPS1可作为结直肠癌治疗药物开发的重要靶点。